器械名称 | 抗透明带抗体IgG测定试剂盒(化学发光法) | 肿瘤相关抗原CA125定量检测试剂盒(化学发光法) |
器械分类 | 国产器械 | 国产器械 |
规格型号 | 96人份/盒,48人份/盒 | 96人份,48人份 |
产家 | 北京源德生物医学工程有限公司 | 北京源德生物医学工程有限公司 |
适用范围 | 本试剂仅供研究使用 | 定量测定人血清或血浆中的CA125含量。 |
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产品说明 | 1. 灵敏度:最小的检测浓度小于1号标准品。稀释度的线性。样品线性回归与预期浓度相关系数R值为0.990。 2. 特异性:不与其它细胞因子反应。 3. 重复性:板内、板间变异系数均小于10%。 |
【使用目的】 用于血清或肝素抗凝血浆样品中肿瘤相关抗原125(CA125)的定量测定。 肿瘤相关抗原125(CA125)是重要的肿瘤标志物之一,属高分子糖蛋白复合物,分子量200-1000kD。CA125主要存在于胚胎发育的体腔上皮细胞及苗勒氏管中,于出生后消失。当这些器官发生病变时血清CA125相应升高,尤其以卵巢癌变时升高为显著。正常人血清CA125含量小于35U/ml。血清CA125含量的改变与癌症分期密切相关,患者手术前后CA125含量的变化也十分明显。因此,血清CA125检测对卵巢癌的辅助诊断、治疗监测和预后判断等有重要意义。 |
用途 | 本试剂仅供研究使用 | |
结构及其组成 | 主要组成成份:CA125单克隆抗体。产品有效期:6个月。附件:制造及检定规程;使用说明书;包装标签。 | |
使用方法 | 1. 使用前,将所有试剂充分混匀。不要使液体产生大量的泡沫,以免加样时加入大量的气泡,产生加样上的误差。 2. 根据待测样品数量加上标准品的数量决定所需的板条数。每个标准品和空白孔建议做复孔。每个样品根据自己的数量来定,能使用复孔的尽量做复孔。标本用标本稀释液1:1稀释后加入50ul于反应孔内。 3. 加入稀释好后的标准品50ul于反应孔、加入待测样品50ul于反应孔内。立即加入50ul的生物素标记的抗体。盖上膜板,轻轻振荡混匀,37℃温育1小时。 4. 甩去孔内液体,每孔加满洗涤液,振荡30秒,甩去洗涤液,用吸水纸拍干。重复此操作3次。如果用洗板机洗涤,洗涤次数增加一次。 5. 每孔加入80ul的亲和链酶素-HRP,轻轻振荡混匀,37℃温育30分钟。 6. 甩去孔内液体,每孔加满洗涤液,振荡30秒,甩去洗涤液,用吸水纸拍干。重复此操作3次。如果用洗板机洗涤,洗涤次数增加一次。 7. 每孔加入底物A、B各50ul,轻轻振荡混匀,37℃温育10分钟。避免光照。 8. 取出酶标板,迅速加入50ul终止液,加入终止液后应立即测定结果。 9. 在450nm波长处测定各孔的OD值。 |
【试验方法】 1.准备:自2-8℃冰箱取出试剂,室温平衡15分钟;浓缩清洗液用用煮沸并预冷的纯化水按1:20稀释成工作液。 2.加样品、校准品、质控物及抗CA125-ALP标记物:待测样品、校准品及质控物分别定位于微孔条板。待测样品、校准品系列及质控物Q1、Q2每孔加20ul,然后各孔加入抗CA125-ALP标记物80ul,混匀。 3.温育:置37℃恒温反应60分钟。 3.洗板:吸除板孔中的反应液,各孔加入洗液约300ul,静置20秒左右,除去其中液体。如此共洗5次,最后一遍将板中液体拍尽。 4.加发光底物液:开启发光测定仪及主控制计算机,预热15分钟。设定测定模式与参数。将微孔板置发光测定仪测定室,用内置加样器加发光底物液,每孔50ul。详见发光测定仪操作指南。 5.测定RLU:于室温25℃左右,设定每孔测定1秒钟。在加发光底物液后的第10-20分钟测定各孔的发光值RLU。并将数据转至定量软件。 6.定量方法:根据各校准品测定的RLU,用Cubic Spline方程建立CA125浓度—RLU的回归方程和绘制校准曲线。根据各样品RLU值,由定量软件直接计算转换成其相应的CA125浓度。存入CA125文档,再输入至病人的检测报告单。 |
产品特点 | ||
注意事项 | 1. 试剂应按标签说明书储存,使用前恢复到室温。稀稀过后的标准品应丢弃,不可保存。 2. 实验中不用的板条应立即放回包装袋中,密封保存,以免变质。 3. 不用的其它试剂应包装好或盖好。不同批号的试剂不要混用。保质前使用。 4. 使用一次性的吸头以免交叉污染,吸取终止液和底物A、B液时,避免使用带金属部分的加样器。 5. 使用干净的塑料容器配置洗涤液。使用前充分混匀试剂盒里的各种成份及样品。 6. 洗涤酶标板时应充分拍干,不要将吸水纸直接放入酶标反应孔中吸水。 7. 底物A应挥发,避免长时间打开盖子。底物B对光敏感,避免长时间暴露于光下。避免用手接触,有毒。实验完成后应立即读取OD值。 8. 加入试剂的顺序应一致,以保证所有反应板孔温育的时间一样。 9. 按照说明书中标明的时间、加液的量及顺序进行温育操作。 |
【注意事项】 1.检测结果的质量控制 1.1平行检测质控物Q1、Q2,结果应在Q1:12.43~17.99U/ml,Q2:177.0~230.94U/ml范围内; 1.2校准品曲线(5-500U/ml范围内)线性相关系数r≥0.9900; 1.3校准品发光值递进比 CA125 CLIA试剂校准品发光值递进比及其99%可信区间 剂量组(U/ml) RLU比值99%可信限区间 500/150 2.63-3.82 150/50 2.77-3.53 50/25 4.07-6.37 25/5 4.17-6.17 5/0 3.43-15.28 各剂量组发光值递进比应在此99%可信区间范围内。 如不同时符合上述条件,该试验无效。 2.本品仅供体外诊断用; 3.试剂启用后应尽快用完,不同批号试剂组分请勿混用。用时请将瓶内容物混匀; 4.免疫反应过程中,务必保持温度恒定准确,控制于37℃; 5.稀释浓缩洗液的纯化水,用前必须煮沸并冷却以灭活其中的细菌磷酸酶; 6.洗板机洗板,每孔注液约300ul,洗板5次,浸泡20秒左右,并检查加液头是否堵塞; 7.手工洗板,勿用带纸屑的吸水材料,防止磷酸酶与底物发生反应,影响检测结果的准确性; 8.加发光底物的加样器吸量应准确,加样器头应经过高压灭菌,并干燥保存。在加发光底物的过程中应避免加样器吸头与板孔或手指接触,以防止底物受到污染; 9.用发光测定仪自动进样器加发光底物时,每天应用空白废弃条一孔检测加样体积是否为设定的50ul,如不够,应该使用Prime功能排气,确保加样体积准确; 10.发光测定仪完成加发光底物模式后,应立即将模式设定为读RLU模式,以防止重复加发光底物液; 11.临床标本均应视为有潜在传染性,请按传染疾病实验室检查规程操作; 12.每个实验室在长期实践中应建立本方法自己的正常值范围。 |
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